聯(lián)系我們
組蛋白的甲基化狀態(tài)影響染色質(zhì)結構和基因表達。組蛋白去甲基化酶活性影響這些調節甲基化標記的分布。研究人員發(fā)現一種稱(chēng)為α-酮戊二酸脫氫酶（KGDH）的酶結合并抑制組蛋白去甲基化酶的活性。KGDH通常與線(xiàn)粒體中的呼吸三羧酸循環(huán)有關(guān)，但其底物α-酮戊二酸也是組蛋白去甲基化酶活性所必需的。KGDH酶進(jìn)入擬南芥細胞的細胞核，可以直接與組蛋白去甲基化酶和染色質(zhì)相互作用。結果，組蛋白去甲基化和基因表達都被KGDH改變，為KGDH提供了呼吸代謝以外的替代作用。
研究背景
核小體組蛋白的甲基化在調節真核轉錄和其他基于染色質(zhì)的過(guò)程中發(fā)揮基本作用。包含Jumonji C結構域的組蛋白去甲基化酶(JMJs)存在于包括動(dòng)物、植物和真菌在內的大多數真核生物中，可動(dòng)態(tài)控制組蛋白甲基化。因此，JMJs在調節基因表達方面起著(zhù)普遍的作用。JMJs是α-酮戊二酸(α-KG)/鐵(II)依賴(lài)的雙加氧酶，利用共底物α-KG和氧通過(guò)氧化從賴(lài)氨酸殘基中去除甲基。
在植物和/或動(dòng)物中，某些JMJs的組蛋白去甲基化活性受到多種機制的調節，包括一些JMJs的翻譯后修飾，以及一些JMJs相關(guān)蛋白、代謝物和共底物氧的調節。目前尚不清楚其他代謝α-KG的酶如何調節核JMJ活性。
實(shí)驗過(guò)程
研究人員構建了幾個(gè)α-酮戊二酸脫氫酶(KGDH)功能缺失的擬南芥突變體，發(fā)現KGDH不僅在控制細胞內的α-KG總量、TCA循環(huán)通量和細胞呼吸中起主要作用，而且還調節生長(cháng)發(fā)育的各個(gè)方面。KGDH缺陷的突變體表現出強效抗氧化劑花青素的積累，向開(kāi)花的發(fā)育過(guò)渡的顯著(zhù)延遲，以及梢發(fā)育的減緩。接下來(lái)，通過(guò)共聚焦熒光成像，發(fā)現一小部分KGDH進(jìn)入細胞核。這一過(guò)程受光照調節。隨后誘變了KGDH亞基E2的核定位信號，發(fā)現線(xiàn)粒體定位的KGDH不能挽救E2突變體中的生長(cháng)和發(fā)育異常。
對各種組蛋白甲基化標記的生化測定表明，細胞核KGDH似乎抑制了整體組蛋白去甲基化。研究團隊假設KGDH可能與JMJs偶聯(lián)來(lái)調節組蛋白甲基化。事實(shí)上，進(jìn)一步的蛋白-蛋白相互作用實(shí)驗表明，核內KGDH直接與多種jmj相互作用，包括組蛋白3賴(lài)氨酸4、組蛋白3賴(lài)氨酸9和組蛋白3賴(lài)氨酸27的去甲基化酶。
研究人員利用RNA測序和染色質(zhì)免疫共沉淀結合DNA測序，探索了核KGDH在控制擬南芥全基因組組蛋白甲基化和基因表達中的功能。KGDH在基因組中占據數千個(gè)位點(diǎn)，與組蛋白甲基化區域相關(guān)。轉錄組學(xué)分析顯示，在KGDHs缺陷的突變體中，數千個(gè)基因發(fā)生了錯誤調節，尤其是環(huán)境應答基因。生化分析發(fā)現核KGDH催化α-KG的氧化脫羧，從而降低與KGDH偶聯(lián)的JMJs對α-KG的局部利用率。減少α-KG導致JMJs抑制組蛋白去甲基化。
進(jìn)一步設計一個(gè)KGDH亞基以增強其核靶向性，這導致JMJs進(jìn)一步抑制組蛋白去甲基化。此外，還發(fā)現核內KGDH-JMJ組合可以激活或抑制靶基因的表達，這依賴(lài)于局部組蛋白甲基化標記的讀出。
通過(guò)蛋白質(zhì)相互作用實(shí)驗，發(fā)現了來(lái)自人類(lèi)和小鼠的一個(gè)KGDH亞基的羧基末端區域與哺乳動(dòng)物JMJs發(fā)生了相互作用。因此，在哺乳動(dòng)物細胞和其他真核生物中，與JMJs的KGDH關(guān)聯(lián)是保守的。
這項研究表明除了在植物中，KGDH可能與JMJs一起在哺乳動(dòng)物中發(fā)揮作用，控制組蛋白去甲基化和基因表達。
在植物中，光通過(guò)JMJs促進(jìn)TCA循環(huán)相關(guān)酶KGDH的核靶向來(lái)調節組蛋白去甲基化
原文：
Methylations on nucleosomal histones play fundamental roles in regulating eukaryotic transcription. Jumonji C domain–containing histone demethylases (JMJs) dynamically control the level of histone methylations. However, how JMJ activity is generally regulated is unknown. We found that the tricarboxylic acid cycle–associated enzyme α-ketoglutarate (α-KG) dehydrogenase (KGDH) entered the nucleus, where it interacted with various JMJs to regulate α-KG–dependent histone demethylations by JMJs, and thus controlled genome-wide gene expression in plants. We show that nuclear targeting is regulated by environmental signals and that KGDH is enriched at thousands of loci in Arabidopsis thaliana. Chromatin-bound KGDH catalyzes α-KG decarboxylation and thus may limit its local availability to KGDH-coupled JMJs, inhibiting histone demethylation. Thus, our results uncover a regulatory mechanism for histone demethylations by JMJs.
